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JC-1 Dyes chimique

N° Cat.S9784

JC-1 (CBIC2, NK 1420), un colorant carbocyanine lipophile fluorescent, est un marqueur du potentiel mitochondrial (ΔΨ(m)). La fluorescence de ce composé est généralement excitée par la longueur d'onde laser de 488 nm, courante dans les cytomètres en flux.
JC-1 Dyes chimique Chemical Structure

Structure chimique

Poids moléculaire: 560.77

Aller à

Contrôle qualité

Lot : S978401 DMSO]33 mg/mL]false]Water]Insoluble]false]Ethanol]Insoluble]false Pureté : 99.34%
99.34

Informations chimiques, stockage et stabilité

Poids moléculaire 560.77 Formule

C25H27Cl5N4

Stockage (À partir de la date de réception) 3 years -20°C powder
N° CAS 3520-43-2 -- Stockage des solutions mères

Solubilité

In vitro
Lot:

DMSO : 33 mg/mL (58.84 mM)
(Le DMSO contaminé par lhumidité peut réduire la solubilité. Utiliser du DMSO frais et anhydre.)

Water : Insoluble

Ethanol : Insoluble

Calculateur de molarité

Masse Concentration Volume Poids moléculaire
Calculateur de dilution Calculateur de poids moléculaire

In vivo
Lot:

Calculateur de formulation in vivo (Solution claire)

Étape 1 : Entrez les informations ci-dessous (Recommandé : Un animal supplémentaire pour tenir compte des pertes pendant lexpérience)

mg/kg g μL

Étape 2 : Entrez la formulation in vivo (Ceci nest que le calculateur, pas la formulation. Veuillez nous contacter dabord sil ny a pas de formulation in vivo dans la section Solubilité.)

% DMSO % % Tween 80 % ddH2O
%DMSO %

Résultats du calcul :

Concentration de travail : mg/ml;

Méthode de préparation du liquide maître DMSO : mg médicament prédissous dans μL DMSO ( Concentration du liquide maître mg/mL, Veuillez nous contacter dabord si la concentration dépasse la solubilité du DMSO du lot de médicament. )

Méthode de préparation de la formulation in vivo : Prendre μL DMSO liquide maître, ajouter ensuiteμL PEG300, mélanger et clarifier, ajouter ensuiteμL Tween 80, mélanger et clarifier, ajouter ensuite μL ddH2O, mélanger et clarifier.

Méthode de préparation de la formulation in vivo : Prendre μL DMSO liquide maître, ajouter ensuite μL Huile de maïs, mélanger et clarifier.

Remarque : 1. Assurez-vous que le liquide est clair avant dajouter le solvant suivant.
2. Assurez-vous dajouter le(s) solvant(s) dans lordre. Vous devez vous assurer que la solution obtenue lors de lajout précédent est une solution claire avant de procéder à lajout du solvant suivant. Des méthodes physiques telles que le vortex, les ultrasons ou le bain-marie peuvent être utilisées pour faciliter la dissolution.

Mécanisme daction

In vitro

1. Prenez la plaque de 6 puits comme exemple pour l'ensemencement des cellules, et la densité est de 5×10^5/mL. Incuber une nuit dans un incubateur à 5% de CO2 à 37℃.
Note: il est suggéré que la densité cellulaire pendant l'induction de l'apoptose ne doit pas dépasser 1×10^6/ml, elle peut également être cultivée à la densité appropriée selon votre propre type de cellule.
2. Prenez 0,5 mL de suspension dans un tube de centrifugeuse stérile; centrifugation à 400 g pendant 3-5 min; Jeter le surnageant.
3. Les cellules ont été resuspendues avec 1 ml de solution de travail de ce composé et incubées dans un incubateur à 5% de CO2 à 37℃ pendant 15-30 min.
4. Centrifugation à température ambiante pendant 5 min à 400 g; Aspirer le surnageant.
5. Les cellules ont été resuspendues avec 2 mL de milieu de culture cellulaire ou de tampon, puis centrifugées à température ambiante pendant 5 min à 400 g; Jeter le surnageant et répéter deux fois.
6. Resuspendre les cellules avec 1mL de milieu de culture frais ou de tampon, et effectuer immédiatement l'observation ultérieure par cytométrie en flux ou microscope à fluorescence.
7. Analyse des données (cytométrie en flux) : les mitochondries des cellules saines contenant des agrégats rouges de ce composé ont été détectées par le canal FL2; Les cellules apoptotiques ou malsaines contenant des monomères verts de ce composé ont été détectées par le canal FL1 (FITC).
8. S'il est utilisé pour un instrument de marquage enzymatique, utiliser 300 μL de cellules resuspendues dans un tampon; Puis 100 par trou μ Transférer les cellules colorées dans une plaque de 96 puits étanche à la lumière avec la quantité de L, puis effectuer une analyse de la plaque de marquage enzymatique fluorescent.

Références

Informations sur lessai clinique

(données de https://clinicaltrials.gov, mis à jour le 2024-05-22)

Numéro NCT Recrutement Conditions Sponsor/Collaborateurs Date de début Phases
NCT03161561 Completed
COPD
Sheffield Teaching Hospitals NHS Foundation Trust
November 16 2011 Not Applicable

Support technique

Instructions de manipulation

Tel: +1-832-582-8158 Ext:3

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