Sunitinib (SU11248) Malate

N° de catalogueS1042 Lot:S104210

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Données techniques

Formule

C22H27FN4O2.C4H6O5

Poids moléculaire 532.56 N° CAS 341031-54-7
Solubilité (25°C)* In vitro DMSO 100 mg/mL (187.77 mM)
Water Insoluble
Ethanol Insoluble
In Vivo (Ajoutez les solvants au produit individuellement et dans lordre.)
Homogeneous suspension
CMC-NA
≥5mg/ml Taking the 1 mL working solution as an example, add 5 mg of this product to 1 ml of CMC-Na solution, mix evenly to obtain a homogeneous suspension with a final concentration of 5 mg/ml.
* <1 mg/ml signifie légèrement soluble ou insoluble.
* Veuillez noter que Selleck teste la solubilité de tous les composés en interne, et la solubilité réelle peut différer légèrement des valeurs publiées. Ceci est normal et est dû à de légères variations dun lot à lautre.
* Expédition à température ambiante (les tests de stabilité montrent que ce produit peut être expédié sans aucune mesure de refroidissement.)

Préparation des solutions mères

Activité biologique

Description Le Sunitinib malate est un inhibiteur de RTK multi-cibles visant VEGFR2 (Flk-1) et PDGFRβ avec une IC50 de 80 nM et 2 nM dans des tests sans cellules, et inhibe également c-Kit. Le Sunitinib Malate inhibe efficacement l'autophosphorylation d'Ire1α. Le Sunitinib Malate augmente à la fois le récepteur de mort et l'apoptose dépendante des mitochondries.
Cibles
IRE1α Kit
(Cell-free assay)
FLT3
(Cell-free assay)
PDGFRβ
(Cell-free assay)
VEGFR2
(Cell-free assay)
2 nM 80 nM
In vitro

Le Sunitinib inhibe également puissamment Kit et FLT-3. Le Sunitinib est un puissant inhibiteur compétitif de l'ATP de VEGFR2 (Flk1) et PDGFRβ avec des Ki de 9 nM et 8 nM, respectivement, affichant une sélectivité >10 fois supérieure pour VEGFR2 et PDGFR que pour FGFR-1, EGFR, Cdk2, Met, IGFR-1, Abl et src. Dans les cellules NIH-3T3 privées de sérum exprimant VEGFR2 ou PDGFRβ, le Sunitinib inhibe la phosphorylation de VEGFR2 dépendante du VEGF et la phosphorylation de PDGFRβ dépendante du PDGF avec une IC50 de 10 nM et 10 nM, respectivement. Le Sunitinib inhibe la prolifération induite par le VEGF des HUVEC privées de sérum avec une IC50 de 40 nM, et inhibe la prolifération induite par le PDGF des cellules NIH-3T3 surexprimant PDGFRβ ou PDGFRα avec une IC50 de 39 nM et 69 nM, respectivement. Le Sunitinib inhibe la phosphorylation des FLT3 de type sauvage, FLT3-ITD et FLT3-Asp835 avec des IC50 de 250 nM, 50 nM et 30 nM, respectivement. Le Sunitinib inhibe la prolifération des cellules MV4;11 et OC1-AML5 avec des IC50 de 8 nM et 14 nM, respectivement, et induit l'apoptose de manière dose-dépendante.

In Vivo

Conformément à l'inhibition substantielle et sélective de la phosphorylation et de la signalisation de VEGFR2 ou PDGFR in vivo, le Sunitinib (20-80 mg/kg/jour) présente une activité antitumorale large et puissante dose-dépendante contre une variété de modèles de xénogreffes tumorales, y compris HT-29, A431, Colo205, H-460, SF763T, C6, A375 ou MDA-MB-435. L'administration de Sunitinib à 80 mg/kg/jour pendant 21 jours entraîne une régression tumorale complète chez six des huit souris, sans repousse tumorale pendant une période d'observation de 110 jours après la fin du traitement. Une deuxième série de traitement avec le Sunitinib reste efficace contre les tumeurs qui n'ont pas complètement régressé pendant la première série de traitement. Le traitement au Sunitinib entraîne une diminution significative de la MVD tumorale, avec une réduction d'environ 40 % dans les tumeurs de gliome SF763T. Le traitement au SU11248 entraîne une inhibition complète de la croissance tumorale supplémentaire des xénogreffes PC-3M exprimant la luciférase, malgré l'absence de réduction de la taille de la tumeur. Le traitement au Sunitinib (20 mg/kg/jour) supprime de manière spectaculaire la croissance des xénogreffes sous-cutanées MV4;11 (FLT3-ITD) et prolonge la survie dans le modèle de greffe de moelle osseuse FLT3-ITD.

Protocole (de référence)

Test kinase :

[1]

  • Tests biochimiques de tyrosine kinase

    Les valeurs IC50 du Sunitinib contre VEGFR2 (Flk-1) et PDGFRβ sont déterminées à l'aide de protéines de fusion glutathion S-transférase contenant le domaine cytoplasmique complet de la RTK. Les tests biochimiques de tyrosine kinase pour quantifier l'activité de trans-phosphorylation de VEGFR2 (Flk-1) et PDGFRβ sont effectués dans des plaques de microtitration à 96 puits pré-enduites (20 μg/puits dans du PBS ; incubées pendant une nuit à 4 °C) avec le substrat peptidique poly-Glu,Tyr (4:1). Les sites de liaison protéiques en excès sont bloqués par l'addition de 1 à 5 % (p/v) de BSA dans du PBS. Les protéines de fusion GST purifiées sont produites dans des cellules d'insectes infectées par le baculovirus. Le GST-VEGFR2 et le GST-PDGFRβ sont ensuite ajoutés aux puits de microtitration dans un tampon de dilution de kinase à 2 × concentration, composé de 100 mM HEPES, 50 mM NaCl, 40 μM NaVO4 et 0,02 % (p/v) de BSA. La concentration enzymatique finale pour le GST-VEGFR2 ou le GST-PDGFRβ est de 50 ng/mL. Vingt-cinq μL de Sunitinib dilué sont ensuite ajoutés à chaque puits de réaction pour produire une gamme de concentrations d'inhibiteur appropriées pour chaque enzyme. La réaction de kinase est initiée par l'addition de différentes concentrations d'ATP dans une solution de MnCl2, de sorte que les concentrations finales d'ATP couvrent le Km de l'enzyme, et la concentration finale de MnCl2 est de 10 mM. Les plaques sont incubées pendant 5 à 15 minutes à température ambiante avant d'arrêter la réaction par l'ajout d'EDTA. Les plaques sont ensuite lavées trois fois avec du TBST. Des antisérums polyclonaux de lapin anti-phosphotyrosine sont ajoutés aux puits à une dilution de 1:10 000 dans du TBST contenant 0,5 % (p/v) de BSA, 0,025 % (p/v) de lait écrémé en poudre et 100 μM NaVO4 et incubés pendant 1 heure à 37 °C. Les plaques sont ensuite lavées trois fois avec du TBST, suivies de l'ajout d'antisérums de chèvre anti-lapin conjugués à la peroxydase de raifort (dilution 1:10 000 dans du TBST). Les plaques sont incubées pendant 1 heure à 37 °C, puis lavées trois fois avec du TBST. La quantité de phosphotyrosine dans chaque puits est quantifiée après l'ajout de 2,2′-azino-di-[3-éthylbenzthiazoline sulfonate] comme substrat.

Test cellulaire :

[3]

  • Lignées cellulaires

    RS4;11, MV4;11, and OC1-AML5

  • Concentrations

    Dissolved in DMSO, final concentrations ~10 μM

  • Temps dincubation

    24 and 48 hours

  • Méthode

    Cells are starved overnight in medium containing 0.1% FBS prior to addition of Sunitinib and FL (50 ng/mL; FLT3-WT cells only). Proliferation is measured after 48 hours of culture using the Alamar Blue assay or trypan blue cell viability assays. Apoptosis is measured 24 hours after Sunitinib addition by Western blotting to detect cleavage of poly (ADP-ribose) polymerase (PARP) or levels of caspase-3.

Étude animale :

[2]

  • Modèles animaux

    Female nu/nu mice implanted s.c. with HT-29, A431, Colo205, H-460, SF763T, C6, A375, or MDA-MB-435, and male nu/nu mice bearing luciferase-expressing PC-3M tumors

  • Dosages

    ~80 mg/kg

  • Administration

    Orally once daily

Références

  • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12646019/
  • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12538485/
  • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/12531805/
  • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14578466/
  • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15304385/
  • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17041096/
  • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21317875/

Validation du produit par le client

<p>Sunitinib decreases FLT-3 and RET phosphor ylation but increases ERK phosphorylation in a time-dependent manner. H295R and SW13 cells were treated with sunitinib (10 nM) for various time points as indi-cated. Cell lysates were prepared and phospho-FLT-3, RET, and ERK levels were monitored by Western Blot-ting. Re-probing against FLT-3, RET, and ERK was done to ensure equal protein loading.</p>

Données de [ Surgery , 2012 , 152, 1045-50 ]

<p>Sunitinib or PD98059 decreases cell proliferation in a dose-dependent manner. H295R and SW13 cells were treated with various concentration of sunitinib or PD98059 for 48 hours as indicated. Treated cells were subjected to the MTS proliferation assay. Similar experiments were repeated 3 times. Histograms represent relative % of OD490 nm absorbance (* P < .05). All data are relative multiples of expression compared with untreated cells. The data are representative of three experiments and are expressed as the mean ?SE.</p>

Données de [ Surgery , 2012 , 152, 1045-50 ]

<p>Autophagic activation in sunitinib- and sorafenib- but not AZD6244-treated cells. Medullary thyroid cancer-1.1 (MTC-1.1; A) and TT ( B) cells were treated with dimethyl sulfoxide (DMSO), sunitinib (50 nM), sorafenib (10 nM), AZD6244 (30 nM), or everolimus (20 nM) for 48 hours. Cell lysates were prepared, and light chain 3 (LC3)-I and -II cleaved caspase-3 protein levels were monitored by Western blotting. Reprobing against actin was per formed to ensure equal protein loading. ( C ) MTC-1.1 and TT cells were transiently transfected with autophagy protein 5 (Atg-5) small inter fering RNA. Transfection with scrambled small inter fering RNA was used as a control. After transfection, cells with and without Atg-5 knockdown were exposed to DMSO or 20 nM of everolimus for 48 hours. Cell lysates were pre- pared and LC3-I and -II protein expression levels were monitored by Western blotting. Reprobing against Atg-5 was per formed to monitor Atg-5 knockdown efficiency. Reprobing against actin was per formed to ensure equal protein.</p>

Données de [ Surgery , 2012 , 152, 1142-9 ]

<p>Autophagy inhibition blocks the antiproliferative effects of sunitinib and sorafenib but not AZD6244. Medullary thyroid cancer–1.1 (MTC-1.1) and TT cells were transfected transiently with scrambled or autophagy protein 5 (Atg-5) small inter fering RNA. After transfection, cells with and without Atg-5 knockdown were exposed to sunitinib (50 nM), sorafenib (10 nM), and AZD6244 (30 nM) for 48 hours. Treated cells were subjected to a 3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-5-(3-carboxymethoxyphenyl)-2-(4-sulfophenyl)-2H-tetrazolium proliferation assay. Similar experiments were repeated 3 times. Histograms represent the relative percent of OD490 nM absorbance. The asterisk indicates significance versus scrambled small inter fering RNA–treated control ( P < .05). All data are relative multiples of expression compared to untreated cells. The data are representative of 3 experiments and are expressed as the mean ± the standard error.</p>

Données de [ Surgery , 2012 , 152, 1142-9 ]

De Selleck Sunitinib (SU11248) Malate A été cité par 176 Publications

Prolonging lung cancer response to EGFR inhibition by targeting the selective advantage of resistant cells [ Nat Commun, 2025, 16(1):7853] PubMed: 40846697
Electroacupuncture Prevents Against AD-Like Phenotypes in APP/PS1 Mice: Investigation of the Mechanisms From Cerebral Microangiopathy [ CNS Neurosci Ther, 2025, 31(12):e70696] PubMed: 41367129
Biofabrication of pheochromocytoma and paraganglioma tumor organoids and assessment of response to systemic therapy [ Sci Rep, 2025, 15(1):35889] PubMed: 41087622
Overexpression of CSRP1 Suppresses Cell Viability and Enhances the Anti-Cancer Effects of Anti-PD-L1 Therapy in Renal Cell Carcinoma [ Front Biosci (Landmark Ed), 2025, 30(11):46252] PubMed: 41351404
Establishment, characterization, and biobanking of 36 pancreatic cancer organoids: prediction of metastasis in resectable pancreatic cancer [ Cell Oncol (Dordr), 2024, 10.1007/s13402-024-00939-5] PubMed: 38619751
Patient-derived rhabdomyosarcoma cells recapitulate the genetic and transcriptomic landscapes of primary tumors [ iScience, 2024, 27(10):110862] PubMed: 39319271
Canthin-6-One Inhibits Developmental and Tumour-Associated Angiogenesis in Zebrafish [ Pharmaceuticals (Basel), 2024, 17(1)108] PubMed: 38256941
Impact of sunitinib resistance on clear cell renal cell carcinoma therapeutic sensitivity in vitro [ Cell Cycle, 2024, 1-13.] PubMed: 38263737
Multi-omics and immunogenomics analysis revealed PFKFB3 as a targetable hallmark and mediates sunitinib resistance in papillary renal cell carcinoma: in silico study with laboratory verification [ Eur J Med Res, 2024, 29(1):236] PubMed: 38622715
Elucidation and Regulation of Tyrosine Kinase Inhibitor Resistance in Renal Cell Carcinoma Cells from the Perspective of Glutamine Metabolism [ Metabolites, 2024, 14(3)170] PubMed: 38535330

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