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Description biologique
| Spécificité | SCG10/Stathmin-2 Antibody [D11B18] détecte les niveaux endogènes de la protéine SCG10/Stathmin-2 totale. |
|---|---|
| Contexte | SCG10 (Stathmin-2, STMN2) est une protéine déstabilisatrice de microtubules enrichie neuronalement, appartenant à la famille des stathmines, essentielle pour la croissance et la régénération axonale. Elle contient un domaine régulateur N-terminal avec quatre sites de phosphorylation clés (Ser22, Ser25, Ser38, Ser63) qui sont ciblés par des kinases telles que JNK1, MAPK et PKA. La région C-terminale présente un domaine α-hélicoïdal de type stathmine abritant deux poches de liaison à la tubuline, permettant à SCG10 de séquestrer les hétérodimères d'α/β-tubuline dans une stœchiométrie de 1:2. Cette séquestration empêche l'assemblage longitudinal des protofilaments et inhibe ainsi la polymérisation des microtubules. Dans son état déphosphorylé, SCG10 se lie à la tubuline libre avec une haute affinité (Kd ~0,3–1 μM), favorisant la catastrophe des microtubules en déplaçant la dynamique vers la dépolymérisation par piégeage de la tubuline compétente pour la GTPase. La phosphorylation de SCG10, cependant, introduit des charges négatives et induit des changements conformationnels qui perturbent la liaison à la tubuline, libérant ainsi les hétérodimères de tubuline pour la croissance des microtubules. Ce mécanisme stabilise les microtubules axonaux pendant la croissance. La phosphorylation de Ser22/Thr22 médiatisée par JNK1 est particulièrement importante lors de la migration des neurones corticaux, régulant la transition de la morphologie multipolaire à bipolaire et modulant la vitesse de migration radiale. L'expression de SCG10 est la plus élevée dans les neurones du SNC en développement, où elle médie le remodelage des microtubules dépendant du Ca²⁺ via la liaison à la calmyrine, facilitant la dynamique du cône de croissance et contribuant à la régénération axonale après une lésion. La perte de TDP-43 dans la SLA/DFT entraîne l'inclusion d'exons cryptiques dans les transcrits de STMN2, ce qui entraîne une déplétion de la protéine SCG10 fonctionnelle. Cela provoque une dégénérescence axonale, une rétraction de la jonction neuromusculaire et des déficits moteurs, des phénotypes qui peuvent être inversés en restaurant l'expression complète de STMN2. |
Informations dutilisation
| Application | IP, IHC | Dilution |
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|---|---|---|---|
| Réactivité | Human, Mouse, Rat | ||
| Source | Mouse Monoclonal Antibody | MW | ˜20 kDa |
| Tampon de stockage | PBS, pH 7.2+50% Glycerol+0.05% BSA+0.01% NaN3 | Stockage (À partir de la date de réception) |
-20°C (avoid freeze-thaw cycles), 2 years |
| IHC |
Experimental Protocol：
Deparaffinization/Rehydration
1. Deparaffinize/hydrate sections:
2. Incubate sections in three washes of xylene for 5 min each.
3. Incubate sections in two washes of 100% ethanol for 10 min each.
4. Incubate sections in two washes of 95% ethanol for 10 min each.
5. Wash sections two times in dH2O for 5 min each.
6.Antigen retrieval: For Citrate: Heat slides in a microwave submersed in 1X citrate unmasking solution until boiling is initiated; continue with 10 min at a sub-boiling temperature (95°-98°C). Cool slides on bench top for 30 min.
Staining
1. Wash sections in dH2O three times for 5 min each.
2. Incubate sections in 3% hydrogen peroxide for 10 min.
3. Wash sections in dH2O two times for 5 min each.
4. Wash sections in wash buffer for 5 min.
5. Block each section with 100–400 µl of blocking solution for 1 hr at room temperature.
6. Remove blocking solution and add 100–400 µl primary antibody diluent in to each section. Incubate overnight at 4°C.
7. Remove antibody solution and wash sections with wash buffer three times for 5 min each.
8. Cover section with 1–3 drops HRPas needed. Incubate in a humidified chamber for 30 min at room temperature.
9. Wash sections three times with wash buffer for 5 min each.
10. Add DAB Chromogen Concentrate to DAB Diluent and mix well before use.
11. Apply 100–400 µl DAB to each section and monitor closely. 1–10 min generally provides an acceptable staining intensity.
12. Immerse slides in dH2O.
13. If desired, counterstain sections with hematoxylin.
14. Wash sections in dH2O two times for 5 min each.
15. Dehydrate sections: Incubate sections in 95% ethanol two times for 10 sec each; Repeat in 100% ethanol, incubating sections two times for 10 sec each; Repeat in xylene, incubating sections two times for 10 sec each.
16. Mount sections with coverslips and mounting medium.
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| IF |
Experimental Protocol:
Sample Preparation
1. Adherent Cells: Place a clean, sterile coverslip in a culture dish. Once the cells grow to near confluence as a monolayer, remove the coverslip for further use.
2. Suspension Cells: Seed the cells onto a clean, sterile slide coated with poly-L-lysine.
3. Frozen Sections: Allow the slide to thaw at room temperature. Wash it with pure water or PBS for 2 times, 3 minutes each time.
4. Paraffin Sections: Deparaffinization and rehydration. Wash the slide with pure water or PBS for 3 times, 3 minutes each time. Then perform antigen retrieval.
Fixation
1. Fix the cell coverslips/spots or tissue sections at room temperature using a fixative such as 4% paraformaldehyde (4% PFA) for 10-15 minutes.
2. Wash the sample with PBS for 3 times, 3 minutes each time.
Permeabilization
1.Add a detergent such as 0.1–0.3% Triton X-100 to the sample and incubate at room temperature for 10–20 minutes.
(Note: This step is only required for intracellular antigens. For antigens expressed on the cell membrane, this step is unnecessary.)
Wash the sample with PBS for 3 times, 3 minutes each time.
Blocking
Add blocking solution and incubate at room temperature for at least 1 hour. (Common blocking solutions include: serum from the same source as the secondary antibody, BSA, or goat serum.)
Note: Ensure the sample remains moist during and after the blocking step to prevent drying, which can lead to high background.
Immunofluorescence Staining (Day 1)
1. Remove the blocking solution and add the diluted primary antibody.
2. Incubate the sample in a humidified chamber at 4°C overnight.
Immunofluorescence Staining (Day 2)
1. Remove the primary antibody and wash with PBST for 3 times, 5 minutes each time.
2. Add the diluted fluorescent secondary antibody and incubate in the dark at 4°C for 1–2 hours.
3. Remove the secondary antibody and wash with PBST for 3 times, 5 minutes each time.
4. Add diluted DAPI and incubate at room temperature in the dark for 5–10 minutes.
5. Wash with PBST for 3 times, 5 minutes each time.
Mounting
1. Mount the sample with an anti-fade mounting medium.
2. Allow the slide to dry at room temperature overnight in the dark.
3. Store the slide in a slide storage box at 4°C, protected from light.
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Références
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