uitsluitend voor onderzoeksdoeleinden

Hoechst 33342 Dyes Chemische

Cat.Nr.: S0485

Hoechst 33342 (Pibenzimol, bisBenzimide H 33342, HOE 33342, HO342) is een membraanpermeabel fluorescerende kleurstof die levende cellen kan aankleuren. Deze verbinding bindt zich aan adenine-thymine-rijke gebieden van DNA in de kleine groef en verhoogt de fluorescentie aanzienlijk. Het maakt een eenvoudige visualisatie mogelijk van de kern in interfasecellen en chromosomen in mitotische cellen.
Hoechst 33342 Dyes Chemische Chemical Structure

Chemische structuur

Moleculair gewicht: 452.55

Ga naar

Kwaliteitscontrole (Quality Control)

Batch: Zuiverheid: 99.94%
99.94

Chemische informatie, Opslag en Stabiliteit (Chemical Information, Storage & Stability)

Moleculair gewicht 452.55 Formule

C27H28N6O

Opslag (Vanaf de ontvangstdatum) 3 years -20°C powder
CAS-nr. 23491-52-3 -- Opslag van stamoplossingen

Synoniemen Pibenzimol, bisBenzimide H 33342, HOE 33342, HO342 Smiles CCOC1=CC=C(C=C1)C2=NC3=C(N2)C=C(C=C3)C4=NC5=C(N4)C=C(C=C5)N6CCN(CC6)C

Oplosbaarheid (Solubility)

In vitro
Batch:

Water : 90 mg/mL

DMSO : 10 mg/mL (22.09 mM)
(Met vocht verontreinigde DMSO kan de oplosbaarheid verminderen. Gebruik verse, watervrije DMSO.)

Ethanol : Insoluble

Molariteitscalculator

Massa Concentratie Volume Moleculair gewicht
Verdunningscalculator Moleculair gewicht calculator

In vivo
Batch:

In vivo Formuleringscalculator (Heldere oplossing)

Stap 1: Voer de onderstaande informatie in (Aanbevolen: Een extra dier voor het geval van verlies tijdens het experiment)

mg/kg g μL

Stap 2: Voer de in vivo formulering in (Dit is alleen de calculator, geen formulering. Neem eerst contact met ons op als er geen in vivo formulering is in het gedeelte Oplosbaarheid.)

% DMSO % % Tween 80 % ddH2O
%DMSO %

Berekeningsresultaten:

Werkconcentratie: mg/ml;

Methode voor het bereiden van DMSO-mastervloeistof: mg geneesmiddel vooraf opgelost in μL DMSO ( Concentratie mastervloeistof mg/mL, Neem eerst contact met ons op als de concentratie de DMSO-oplosbaarheid van de partij geneesmiddel overschrijdt. )

Methode voor het bereiden van in vivo formulering: Neem μL DMSO mastervloeistof, voeg vervolgens toeμL PEG300, mengen en helder maken, voeg vervolgens toeμL Tween 80, mengen en helder maken, voeg vervolgens toe μL ddH2O, mengen en helder maken.

Methode voor het bereiden van in vivo formulering: Neem μL DMSO mastervloeistof, voeg vervolgens toe μL Maïsolie, mengen en helder maken.

Opmerking: 1. Zorg ervoor dat de vloeistof helder is voordat u het volgende oplosmiddel toevoegt.
2. Zorg ervoor dat u het/de oplosmiddel(en) in de juiste volgorde toevoegt. U moet ervoor zorgen dat de verkregen oplossing, bij de vorige toevoeging, een heldere oplossing is voordat u verdergaat met het toevoegen van het volgende oplosmiddel. Fysische methoden zoals vortexen, echografie of een warmwaterbad kunnen worden gebruikt om het oplossen te bevorderen.

Werkingsmechanisme (Mechanism of Action)

Targets/IC50/Ki
DNA
In vitro

1.1 Preparation of the stock solution
Dissolve 10 mg of Hoechst 33342 in 5 mL DMSO
Note: It is recommended to store the stock solution at 4℃ or -20℃ away from light and avoid repetitive freeze-thaw cycles.
1.2 Preparation of this compound working solution
Dilute the stock solution in serum-free cell culture medium or PBS to obtain final concentration 10 μg/mL this chemical working solution.
Note: Please adjust the concentration of this reagent working solution according to the actual situation.
1.Cell staining
2.1 Suspension cells(6-well plate)
a. Centrifuge at 1000 g at 4℃ for 3-5 minutes and then discard the supernatant. Wash twice with PBS, 5 minutes each time. The cell density is 1×106/mL.
b. Add 1 mL of working solution, and then incubate at room temperature for 3-10 minutes.
c. Centrifuge at 400 g at 4℃ for 3-4 minutes and then discard the supernatant.
d. Wash twice with PBS, 5 minutes each time.
e. Resuspend cells with serum-free cell culture medium or PBS. Observation by fluorescence microscopy or flow cytometry.
2.2 Adherent cells
a. Culture adherent cells on sterile coverslips.
b. Remove the coverslip from the medium and aspirate excess medium.
c. Add 100 μL of working solution, gently shake it to completely cover the cells,and then incubate at room temperature for 3-10 minutes.
d. Wash twice with medium, 5 minutes each time.Observation by fluorescence microscopy or flow cytometry.

Referenties